单原子材料在电化学生物传感中的研究进展

doi:10.7503/cjcu20220334

摘要/Abstract

摘要：

电化学传感器具有响应速度快、专一性强及准确性高等特点, 已成为生物传感快速检测的重要发展方向之一, 但目前难以达到对单个生物分子的检测水平, 这主要受限于作为核心部件的探针材料. 单原子材料由于其简单明确的原子局域结构, 且具有媲美于生物酶的统一活性位点, 是一种极具潜力的探针材料, 因此受到了广泛关注. 本文综合评述了具有均一局域配位环境的单原子材料的合成，以及其在电化学生物传感中的应用, 并对单原子材料在未来电化学生物传感中面临的挑战和机遇进行了展望.

关键词: 单原子材料, 局域配位结构, 电化学生物传感, 健康监测

Abstract:

Electrochemical sensors have become one of the important development directions for the rapid detection of biosensing on the basis of their fast response， strong specificity and high accuracy， but it is currently difficult to achieve the detection level of single biomolecules， mainly originating from the key probe materials. Single-atom materials featuring their simple and well-defined atomic localized structures have received extensive attention in the field of electrochemical biosensing due to a unified active site rivaling biological enzymes. Herein， the synthesis of single-atom materials with a homogeneous local coordination environment and their applications in electrochemical biosensing are reviewed. Moreover， the challenges and opportunities of single-atom materials in electrochemical biosensing are furtherly outlooked.

Key words: Single-atom material, Local coordination structure, Electrochemical biosensing, Health monitoring

中图分类号:

O646

TrendMD:

江博文, 陈敬轩, 成永华, 桑微, 寇宗魁. 单原子材料在电化学生物传感中的研究进展. 高等学校化学学报, 2022, 43(9): 20220334.

JIANG Bowen, CHEN Jingxuan, CHENG Yonghua, SANG Wei, KOU Zongkui. Recent Progress of Single-atom Materials in Electrochemical Biosensing. Chem. J. Chinese Universities, 2022, 43(9): 20220334.

图/表 12

Fig.1 Applications of bacterial detection(green), viral targets(purple), and cancer biomarkers(blue: circulating tumor cells, red: protein biomarkers, orange: circulating nucleic acids) (A) [ 7], a portable sensing platform using an all?in?one screen?printed electrode(SPE) and a hand?held commercial potentiostat(PalmSens)(B) [ 12]（A） A dotted line for indications where quantitative monitoring is required. Copyright 2017， American Chemical Society；（B） Copyright 2022， Royal Society of Chemistry.

Fig.2 Schematic of atomically dispersed Mn?N4 site catalyst synthesis(A) [ 29], schematic illustration of WC x ?FeNi catalyst consisting of Fe and Ni atoms stabilized on WC x nanocrystallites(majority component) surrounded by carbon sheets(B) [ 31]（A） Copyright 2018， Springer Nature；（B） Copyright 2021， Springer Nature.

Fig.3 Schematic illustration of bottom?up synthesis of dimeric Pt2/graphene catalysts(A) [ 34], schematic illustration of ALD synthesis of Pt?Ru dimers on nitrogen?doped carbon nanotubes(B) [ 35]（A） The balls in cyan， white， red， and blue represent C， H， O， and Pt while the balls in gray represent C atoms in the graphene support. Copyright 2017， Springer Nature；（B） Copyright 2019， Springer Nature.

Fig.4 Schematic illustration of the formation of Pd4?MOF catalyst(A) [ 38], scheme illustrating the proposed formation mechanisms of Cu SAM(B) [ 40]（A） Copyright 2017， Springer Nature；（B） Copyright 2020， American Chemical Society.

Table 1 Summary of single-atom materials biosensing

Detection method	Target	Sample	Limit of detection	Ref.
Electrochemical biosensing	Dopamine（DA）	Ru SAM	20 nmol/L	［ 43］
		Fe SAM	0.007 nmol/L	［ 44］
		Mn SAM	0.05 nmol/L	［ 45］
	Glucose	Co SAM	1.2×10 ⁵ nmol/L	［ 46］
	H₂O₂	Co SAM	100 nmol/L	［ 47］
Electrochemiluminescence biosensing	Ascorbic acid（AA）	Ni SAM	95 nmol/L	［ 48］
	Trolox	Fe SAM	800 nmol/L	［ 49］
	Thrombin（TB）	Ru SAM	0.03 nmol/L	［ 50］
	Thrombin（TB）	Zn SAM	1.0×10 ^-7 nmol/L	［ 51］
Colorimetric biosensing	Acetylcholin esteras（AChE）	Fe SAM	0.2 mU/mL	［ 52］
Photoelectrochemical biosensors	Organophosphorus pesticides（Ops）	Pd SAM	500 nmol/L	［ 53］
Photoelectrochemical biosensors	Prostate specific antigen（PSA）	Pt SAM	6.6×10 ^-6 nmol/L	［ 54］

Fig.5 Schematic diagram of structural single?atom Ru catalyst(A), selectivity of Ru?Ala?C3N4/GCE toward DA(B,C) [ 43], differential pulse voltammetry(DPV) selectivity test of the GCE/Fe?N5 SAM sensor toward DA(10.0 μmol/L) having 1000 nmol/L of other biological, cations and anions in the solutions(pH=7.4)(D) and response time of the GCE/Fe?N5 SAM sensor towards DA(E) [ 44]（A—C） Copyright 2021， American Chemical Society. （D—E） Copyright 2021， Elsevier.

Fig.6 Top and side views of DA interacting with MntopMo(neutral defect) forming a chemical bond and DA adsorbed(physisorbed) on MnMo(A), the detection of 500 nmol/L DA in artificial sweat containing 5000 nmol/L glucose(B), 10% serum in PBS using Pt CE and Ag/AgCl RE(C) and PBS(D) [ 45]（B， C） The Mn-MoS2/PGS sensor is able to detect 50 nmol/L DA in artificial sweat with 5000 nmol/L glucose and 5 nmol/L DA in 10% serum. （A—D） Copyright 2020， American Association for the Advancement of Science.

Fig.7 Schematic of online electrochemical system(OECS) with the GO x /Co?SAM?based biosensor for continuous monitoring of glucose in the brain of rats(A), typical amperometric responses of the OECS toward the microdialysate sampled from rat striatum under normal state and after intraperitoneal injection of 5 U insulin(B) [ 46], the oxidation of glucose at the concave?shaped Co SAM & GO x modified gate electrode(C), free energy diagrams for H2O2 oxidation reaction on concave?shaped Co SAM(red line) and pyrolyzed ZIF?8(black line)(D) [ 47]（B） The biosensor was polarized at 0.20 V. Flow rate： 3 μL/min（coloronline）. （A， B） Copyright 2019， Springer Nature；（C， D） Copyright 2020， Elsevier.

Fig.8 Two carbon?supported nickel SAM with the active centers of Ni?N4(Ni?N4/C) and Ni?N2O2(Ni?N2O2/C)(A), ECL intensity of the modified GCE with C, C?N, Ni?N4/C, and Ni?N2O2/C(B), selectivity of the developed Ni SAM luminol ECL sensor(inset: linear relationship between AA concentration and ECL intensity)(C) [ 48], the mechanism of luminol?O2 ECL systems with Fe?N?C SAM as coreactant accelerator(D), the varied ECL signal with Trolox concentration in the range of 800—10 6 nmol/L(E), the linear relationship between the Trolox concentration and ECL peak intensity(F) [ 49]（A—C） Copyright 2021， American Chemical Society；（D—F） Copyright 2020， Wiley ?VCH.

Fig.9 Diagram for construction of the HH?Ru?UiO?66?NH2 ECL aptasensor(A), ECL responses of different TB concentrations(B), calibrating plot for TB detection(C) [ 50], the ECL signals toward different TB concentrations of 10 -7—0.001 nmol/L(D) [ 51]（A—C） Copyright 2021， American Chemical Society；（D） Copyright 2020， American Chemical Society.

Fig.10 Schematic illustration of the inhibition of the oxidase?like activity of Fe?N?C SAzymes by mercapto molecules(A) [ 75], FeBNC SAzymes with similar single metal atom?based sites(B), the specific activities(U/mg) of FeBNC SAzymes and Fe NC SAzymes(C) [ 78], schematic illustration of detecting AChE activity using a NO2?MIL?101?based biosensor(D), absorption spectra of NO2?MIL?101?based biosensor in the presence of different AChE concentrations(E) [ 52]（A） Copyright 2019， Wiley ?VCH；（B， C） Copyright 2020， Elsevier；（D， E） Copyright 2020， Springer Nature.

Fig.11 Principle of the PdSA/TiO2?based sensing platformutilizing photocatalytic H2 production(A), the inhibition behavior of chlorpyrifos on the photocatalytic HER performance of both PdSA/TiO2 and PdNPs/TiO2(B), the typically photocatalytic response of PdSA/TiO2 toward different concentrations(0.03 ng/mL, 1 ng/mL, 30 ng/mL, 200 ng/mL, 1 mg/mL) of chlorpyrifos, 10 mg/mL(C) [ 53], ion?exchange reaction between single?atom platinum?anchored Zn0.5Cd0.5S and the released copper ion(Cu 2+) from CuO nano label(D), photocurrents of Pt SA?Zn0.5Cd0.5S?based photoelectrochemical immunoassay toward different PSA standards(0, 1, 10, 100, 500, 5000, and 10000 pg/mL)(E), calibration curve of Pt SA?Zn0.5Cd0.5S?based photoelectrochemical(PEC) immunoassay(F), specificity of Pt SA?Zn0.5Cd0.5S?based photoelectrochemical immunoassay(G) [ 54]（D） mAb1： Mouse monoclonal anti?human PSA antibody； pAb2： rabbit polyclonal anti?human PSA antibody；

参考文献 83

1	Paganelli A. I.， Mondéjar A. G.， Silva A. C. D.， Silva⁃Calpa G.， Teixeira M. F.， Carvalho F.， Raposo A.， Endler M.， J. Biomed. Inf.， 2022， 127， 104009
2	Miriam M.， Blish C. A.， Sallusto F.， Iwasaki A.， Science， 2022， 375（6585）， 1122—1127
3	Chan M.， Nat. Med.， 2021， 27（3）， 363
4	Wagner C. E.， Saad⁃Roy C. M.， Grenfell B. T.， Nat. Rev. Immunol.， 2022， 22（3）， 139—141
5	Verhoeven P. O.， Grattard F.， Carricajo A.， Lucht F.， Cazorla C.， Garraud O.， Pozzetto B.， Berthelot P.， J. Clin. Microbiol.， 2012， 50（6）， 2063—2065
6	Wu Z.， Guo W. J.， Bai Y. Y.， Zhang L.， Hu J.， Pang D. W.， Zhang Z. L.， Anal. Chem.， 2018， 90（3）， 1683—1690
7	Kelley S. O.， ACS Sens.， 2017， 2（2）， 193—197
8	Huff H. V.， Clin. Infect. Dis.， 2021， 73（9）， e3053—e3054
9	Inal S.， Nat. Biomed. Eng.， 2022， 6（3）， 223—224
10	Haas P.， Then P.， Wild A.， Grange W.， Zorman S.， Hegner M.， Calame M.， Aebi U.， Flammer J.， Hecht B.， Anal. Chem.， 2010， 82（14）， 6299—6302
11	Xu J.， Chau Y.， Lee Y. K.， Micromachines， 2019， 10（12）， 855
12	Riaz M. A.， Chen Y.， Nanoscale Horiz.， 2022， 7， 463—479
13	Yakoh A.， Pimpitak U.， Rengpipat S.， Hirankarn N.， Chailapakul O.， Chaiyo S.， Biosens. Bioelectron.， 2021， 176， 112912
14	Dincer C.， Bruch R.， Kling A.， Dittrich P. S.， Trends Biotechnol.， 2017， 35（8）， 728—742
15	Jiang J.， Xia J.， Zang Y.， Diao G.， Sensors， 2021， 21（22）， 7742
16	Bueno P. R.， Davis J. J.， Chem. Soc. Rev.， 2020， 49（21）， 7505—7515
17	Lei S.， Xu L.， Liu Z.， Zou L.， Li G.， Ye B.， Anal. Chim. Acta， 2019， 1081， 59—64
18	Jiao L.， Yan H.， Wu Y.， Gu W.， Zhu C.， Du D.， Lin Y.， Angew. Chem. Int. Ed. Engl.， 2020， 59（7）， 2565—2576
19	Qiao B.， Wang A.， Yang X.， Allard L. F.， Jiang Z.， Cui Y.， Liu J.， Li J.， Zhang T.， Nat. Chem.， 2011， 3（8）， 634—641
20	Zang W.， Kou Z.， Pennycook S. J.， Wang J.， Adv. Energy Mater.， 2020， 10（9）， 1903181
21	Li P.， Jin Z.， Qian Y.， Fang Z.， Xiao D.， Yu G.， Mater. Today， 2020， 35， 78—86
22	Lu B.， Liu Q.， Chen S.， ACS Catal.， 2020， 10（14）， 7584—7618
23	Echarri A. R.， Cox J. D.， Abajo J. G. D.， Optica， 2019， 6（5）， 630—641
24	Li L.， Chang X.， Lin X.， Zhao Z. J.， Gong J.， Chem. Soc. Rev.， 2020， 49（22）， 8156—8178
25	Gawande M. B.， Ariga K.， Yamauchi A. Y.， Small， 2017， 17， 2101584
26	Jiao L.， Xu W.， Wu Y.， Yan H.， Gu W.， Du D.， Lin Y.， Zhu C.， Chem. Soc. Rev.， 2021， 50（2）， 750—765
27	Yang S.， Tak Y. J.， Kim J.， Soon A.， Lee H.， ACS Catal.， 2017， 7（2）， 1301—1307
28	Yin P.， Yao T.， Wu Y.， Zheng L.， Lin Y.， Liu W.， Ju H.， Zhu J.， Hong X.， Deng Z.， Zhou G.， Wei S.， Li Y.， Angew. Chem. Int. Ed. Engl.， 2016， 55（36）， 10800—10805
29	Li J.， Chen M.， Cullen D. A.， Hwang S.， Wang M.， Li B.， Liu K.， Karakalos S.， Lucero M.， Zhang H.， Lei C.， Xu H.， Sterbinsky G. E.， Feng Z.， Su D.， More K. L.， Wang G.， Wang Z.， Wu G.， Nat. Catal.， 2018， 1（12）， 935—945
30	Yang H.， Shang L.， Zhang Q.， Shi R.， Waterhouse G. I. N.， Gu L.， Zhang T.， Nat. Commun.， 2019， 10（1）， 4585
31	Li S.， Chen B.， Wang Y.， Ye M. Y.， Aken P. A. V.， Cheng C.， Thomas A.， Nat. Mater.， 2021， 20（9）， 1240—1247
32	Ahonen M.， Pessa M.， Suntola T.， Thin Solid Films， 1980， 65（3）， 301—307
33	Fonseca J.， Lu J.， ACS Catal.， 2021， 11（12）， 7018—7059
34	Yan H.， Lin Y.， Wu H.， Zhang W.， Sun Z.， Cheng H.， Liu W.， Wang C.， Li J.， Huang X.， Yao T.， Yang J.， Wei S.， Lu J.， Nat. Commun.， 2017， 8（1）， 1070
35	Zhang L.， Si R.， Liu H.， Chen N.， Wang Q.， Adair K.， Wang Z.， Chen J.， Song Z.， Li J.， Banis M. N.， Li R.， Sham T. K.， Gu M.， Liu L. M.， Botton G. A.， Sun X.， Nat. Commun.， 2019， 10（1）， 4936
36	Xu D.， Wang S.， Wu B.， Zhang B.， Qin Y.， Huo C.， Huang L.， Wen X.， Yang Y.， Li Y.， ACS Appl. Mater. Interfaces， 2019， 11（33）， 29858—29867
37	Chen C. H.， Wu D.， Li Z.， Zhang R.， Kuai C. G.， Zhao X. R.， Dong C. K.， Qiao S. Z.， Liu H.， Du X. W.， Adv. Energy Mater.， 2019， 9（20）， 1803913
38	Fortea⁃Pérez F. R.， Mon M.， Ferrando⁃Soria J.， Boronat M.， Leyva⁃Pérez A.， Corma A.， Herrera J. M.， Osadchii D.， Gascon J.， Armentano D.， Pardo E.， Nat. Mater.， 2017， 16（7）， 760—766
39	Mon M.， Rivero⁃Crespo M. A.， Ferrando⁃Soria J.， Vidal⁃Moya A.， Boronat M.， Leyva⁃Pérez A.， Corma A.， Hernández⁃Garrido J. C.， López⁃Haro M.， Calvino J. J.， Ragazzon G.， Credi A.， Armentano D.， Pardo E.， Angew. Chem. Int. Ed.， 2018， 57（21）， 6186—6191
40	Zhou H.， Zhao Y.， Gan J.， Xu J.， Wang Y.， Lv H.， Fang S.， Wang Z.， Deng Z.， Wang X.， Liu P.， Guo W.， Mao B.， Wang H.， Yao T.， Hong X.， Wei S.， Duan X.， Luo J.， Wu Y.， J. Am. Chem. Soc.， 2020， 142（29）， 12643—12650
41	Xiao K.， Lin R. T.， Wei J. X.， Li N.， Li H.， Ma T.， Liu Z. Q.， Nano Res.， 2022， 15（6）， 4980—4985
42	Xia B.， Zhang Y.， Ran J.， Jaroniec M.， Qiao S. Z.， ACS Cent. Sci.， 2021， 7（1）， 39—54
43	Xie X.， Wang D. P.， Guo C.， Liu Y.， Rao Q.， Lou F.， Li Q.， Dong Y.， Li Q.， Yang H. B.， Hu F. X.， Anal. Chem.， 2021， 93（11）， 4916—4923
44	Bushira F. A.， Kitte S. A.， Li H.， Zheng L.， Wang P.， Jin Y.， J. Electroanal. Chem.， 2022， 904， 115956
45	Lei Y.， Butler D.， Lucking M. C.， Zhang F.， Xia T.， Fujisawa K.， Granzier⁃Nakajima T.， Cruz⁃Silva R.， Endo M.， Terrones H.， Terrones M.， Ebrahimi A.， Sci. Adv.， 2020， 6（32）， eabc4250
46	Hou H.， Mao J.， Han Y.， Wu F.， Zhang M.， Wang D.， Mao L.， Li Y.， Sci. China： Chem.， 2019， 62（12）， 1720—1724
47	Xiong C.， Tian L.， Xiao C.， Xue Z.， Zhou F.， Zhou H.， Zhao Y.， Chen M.， Wang Q.， Qu Y.， Hu Y.， Wang W.， Zhang Y.， Zhou X.， Wang Z.， Yin P.， Mao Y.， Yu Z. Q.， Cao Y.， Duan X.， Zheng L.， Wu Y.， Sci. Bull.， 2020， 65（24）， 2100—2106
48	Gu W.， Wang X.， Wen J.， Cao S.， Jiao L.， Wu Y.， Wei X.， Zheng L.， Hu L.， Zhang L.， Zhu C.， Anal. Chem.， 2021， 93（24）， 8663—8670
49	Gu W.， Wang H.， Jiao L.， Chen Y.， Hu L.， Gong J.， Du D.， Zhu C.， Angew. Chem. Int. Ed.， 2020， 132， 3562—3566
50	Huang W.， Hu G. B.， Liang W. B.， Wang J. M.， Lu M. L.， Yuan R.， Xiao D. R.， Anal. Chem.， 2021， 93（15）， 6239—6245
51	Fang Y.， Wang H. M.， Gu Y. X.， Yu L.， Wang A. J.， Yuan P. X.， Feng J. J.， Anal. Chem.， 2020， 92（4）， 3206—3212
52	Xu W.， Kang Y.， Jiao L.， Wu Y.， Yan H.， Li J.， Gu W.， Song W.， Zhu C.， Nano⁃Micro Lett.， 2020， 12（1）， 184
53	Ge X.， Zhou P.， Zhang Q.， Xia Z.， Chen S.， Gao P.， Zhang Z.， Gu L.， Guo S.， Angew. Chem. Int. Ed.， 2020， 59（1）， 232—236
54	Li B.， Guo L.， Chen M.， Guo Y.， Ge L.， Kwok H. F.， Biosens. Bioelectron.， 2022， 202， 114006
55	Jiang S.， Zhang C.， Zou T.， Nanomaterials， 2020， 10（12）， 2518
56	Wu J.， Wu Y.， Lu L.， Zhang D.， Wang X.， Talanta， 2021， 4， 100075
57	Wang Y.， Liu Y.， Liu W.， Wu J.， Li Q.， Feng Q.， Chen Z.， Xiong X.， Wang D.， Lei Y.， Energy Environ. Sci.， 2020， 13（12）， 4609—4624
58	Cui T.， Wang Y. P.， Ye T.， Wu J.， Chen Z.， Li J.， Lei Y.， Wang D.， Li Y.， Angew. Chem. Int. Ed.， 2022， 61（12）， e202115219
59	Bakirhan N. K.， Topal B. D.， Ozcelikay G.， Karadurmus L.， Ozkan S. A.， Crit. Rev. Anal. Chem.， 2022， 52（3）， 519—534
60	Zhu C.， Yang G.， Li H.， Du D.， Lin Y.， Anal. Chem.， 2015， 87（1）， 230—249
61	Tiwari J. N.， Vij V.， Kemp K. C.， Kim K. S.， ACS Nano， 2016， 10（1）， 46—80
62	Zhou W. Y.， Li S. S.， Xiao X. Y.， Chen S. H.， Liu J. H.， Huang X. J.， Chem. Commun.， 2018， 54（67）， 9329—9332
63	Zhuo Y.， Wang H. J.， Lei Y. M.， Zhang P.， Liu J. L.， Chai Y. Q.， Yuan R.， Analyst， 2018， 143（14）， 3230—3248
64	Jin H.， Ye D.， Shen L.， Fu R.， Tang Y.， Jung J. C.， Zhao H.， Zhang J.， Anal. Chem.， 2022， 94（3）， 1499—1509
65	Wang Y.， Tang Y. J.， Zhou K.， J. Am. Chem. Soc.， 2019， 141（36）， 14115—14119
66	Yebra⁃Biurrun M. C.， Talanta， 2000， 52， 367—383
67	Hu G. B.， Xiong C. Y.， Liang W. B.， Zeng X. S.， Xu H. L.， Yang Y.， Yao L. Y.， Yuan R.， Xiao D. R.， ACS Appl. Mater. Interfaces， 2018， 10（18）， 15913—15919
68	Chen R.， Zhang J.， Chelora J.， Xiong Y.， Kershaw S. V.， Li K. F.， Lo P. K.， Cheah K. W.， Rogach A. L.， Zapien J. A.， Lee C. S.， ACS Appl. Mater. Interfaces， 2017， 9（7）， 5699—5708
69	Yin H. Q.， Yang J. C.， Yin X. B.， Anal. Chem.， 2017， 89（24）， 13434—13440
70	Wu Y.， Wu J.， Jiao L.， Xu W.， Wang H.， Wei X.， Gu W.， Ren G.， Zhang N.， Zhang Q.， Huang L.， Gu L.， Zhu C.， Anal. Chem.， 2020， 92（4）， 3373—3379
71	Wang Y.， Qi K.， Yu S.， Jia G.， Cheng Z.， Zheng L.， Wu Q.， Bao Q.， Wang Q.， Zhao J.， Cui X.， Zheng W.， Nano⁃Micro Lett.， 2019， 11（1）， 102
72	Chen M.， Zhou H.， Liu X.， Yuan T.， Wang W.， Zhao C.， Zhao Y.， Zhou F.， Wang X.， Xue Z.， Yao T.， Xiong C.， Wu Y.， Small， 2020， 16（31）， e2002343
73	Zhang X.， Li G.， Chen G.， Wu D.， Zhou X.， Wu Y.， Coord. Chem. Rev.， 2020， 418， 213376
74	Huang L.， Chen J.， Gan L.， Wang J.， Dong S.， Sci. Adv.， 2019， 5（5）， eaav549
75	Wu Y.， Jiao L.， Luo X.， Xu W.， Wei X.， Wang H.， Yan H.， Gu W.， Xu B. Z.， Du D.， Lin Y.， Zhu C.， Small， 2019， 15（43）， e1903108
76	Huo M.， Wang L.， Wang Y.， Chen Y.， Shi J.， ACS Nano， 2019， 13（2）， 2643—2653
77	Zhao C.， Xiong C.， Liu X.， Qiao M.， Li Z.， Yuan T.， Wang J.， Qu Y.， Wang X.， Zhou F.， Xu Q.， Wang S.， Chen M.， Wang W.， Li Y.， Yao T.， Wu Y.， Li Y.， Chem. Commun.， 2019， 55（16）， 2285—2288
78	Jiao L.， Xu W.， Zhang Y.， Wu Y.， Gu W.， Ge X.， Chen B.， Zhu C.， Guo S.， Nano Today， 2020， 35， 100971
79	Zhao W. W.， Xu J. J.， Chen H. Y.， Anal. Chem.， 2018， 90（1）， 615—627
80	Qiu Z.， Tang D.， J. Mater. Chem. B， 2020， 8（13）， 2541—2561
81	Kaiser S. K.， Chen Z.， Akl D. F.， Mitchell S.， Pérez⁃Ramirez J.， Chem. Rev.， 2020， 120（21）， 11703—11809
82	Shu J.， Tang D.， Anal. Chem.， 2020， 92（1）， 363—377
83	Zhao C. Q.， Ding S. N.， Coord. Chem. Rev.， 2019， 391， 1—14

[1]	沙蒙, 许维庆, 吴志超, 顾文玲, 朱成周. 单原子材料类酶催化及生物医学应用研究进展[J]. 高等学校化学学报, 2022, 43(5): 20220077.
[2]	王春燕,蒋晓青,周泊. 基于Cu-TPA的电化学生物传感器对黄曲霉毒素B1的检测[J]. 高等学校化学学报, 2019, 40(11): 2301.
[3]	刘仁植, 李晓严. MoS₂中空纳米球的制备及在超灵敏microRNA电化学生物传感器中的应用[J]. 高等学校化学学报, 2017, 38(3): 383.
[4]	王青, 刘卫, 羊小海, 王柯敏, 刘沛, 何磊良. 纳米金颗粒增强信号的电化学生物传感器用于谷胱甘肽和半胱氨酸的检测[J]. 高等学校化学学报, 2013, 34(8): 1845.
[5]	封科军, 姚艳玲, 沈国励, 俞汝勤. 基于单壁碳纳米管-DNA酶复合结构的电化学生物传感器[J]. 高等学校化学学报, 2012, 33(08): 1676.
[6]	郑静,冯婉娟,程圭芳,黄翠华,林莉,何品刚,方禹之 . 利用互补核酸杂交富集金胶实现信号扩增的电化学凝血酶蛋白生物传感器研究[J]. 高等学校化学学报, 2007, 28(12): 2274.